shRNA Gene Knockdown 솔루션
VectorBuilder는 RNAi 실험을 위한 포괄적인 shRNA 솔루션을 제공합니다. U6 기반 및 miR30 기반 shRNA 벡터를 쉽게 디자인하고, 바이러스 패키징, library 제작 및 스크리닝 및 stable cell line 엔지니어링을 수행할 수 있습니다. VectorBuilder의 shRNA 서비스는 loss-of-function 연구를 가속화하는 매우 효율적인 원스톱 솔루션을 제공합니다.
주요 특징

커스텀: Whole-genome shRNA 데이터베이스와 완벽하게 연동되는 직관적인 online design studio를 제공.

간소화: 실험 설계부터 stable cell line 엔지니어링 및 library 스크리닝까지 모든 서비스를 제공.

전문성: 100% sequence 검증, 빠른 제작, 경쟁력 있는 가격, 그리고 강력한 기술지원을 제공.
제공하는 서비스

shRNA 벡터

shRNA 바이러스

shRNA 3+1 패키지

LNP Encapsulation

shRNA 개발 서비스
무료로 제공되는 사용자 친화적인 온라인 디자인 플랫폼을 통해 유전자 knockdown 실험에 필요한 커스텀 및 premade shRNA 벡터를 쉽게 디자인하고 주문할 수 있습니다.
VectorBuilder는 transfection이 어려운 세포에서 고효율 shRNA knockdown을 달성하기 위한 고품질 바이러스 패키징 서비스를 제공합니다. VectorBuilder의 독자적인 바이러스 패키징 기술은 향상된 titer, 순도, 생존율 및 일관성을 보장합니다.
VectorBuilder는 고객의 GOI를 표적으로 하는 3개의 custom shRNA 바이러스와 1개의 scramble control 바이러스를 제공합니다.
VectorBuilder의 LNP encapsulation 서비스를 활용하여, siRNA를 균일하고 encapsulation 효율이 높은 LNP로 쉽게 패키징할 수 있습니다.
VectorBuilder는 고효율 기능 유전체학 연구를 위해 커스텀 및 premade shRNA library와 stable cell line을 제공합니다.

VectorBuilder는 library의 디자인, 클로닝, 패키징 서비스와 함께 풀링된 library에 대한 in vitro 및 in vivo 기능 스크리닝, deconvolution 서비스를 제공합니다.

인간과 마우스를 대상으로 whole genome 및 elite gene 규모에 걸쳐 풀링된 shRNA library이며, 각 유전자는 5~6개의 서로 다른 shRNA로 표적화 됩니다.

GOI의 장기적 억제가 필요한 응용 분야에 적합한 knockdown stable cell lines을 포괄적인 QC와 함께 제공합니다.
VectorBuilder의 커스텀 shRNA knockdown 솔루션으로 연구를 간소화하세요.
Contact Us디자인 팁
| 카테고리 | 권장 |
|---|---|
| shRNA의 수 | 강력하고 신뢰할 수 있는 knockdown을 보장하기 위해 동일한 GOI를 표적으로 하는 최소 3개의 서로 다른 shRNA를 테스트하십시오. |
| Promoter 선택 |
|
| 타겟 영역 |
|
| 일반 권장 사항 | miR 기반 벡터는 유연성이 뛰어난 반면, U6 벡터는 일관적으로 더 강력한 knockdown 효과를 제공합니다. 따라서 특정 miR 기반 기능이 필요한 경우가 아니라면 U6를 권장합니다. |
기술 정보
shRNA-매개 유전자 knockdown
shRNA 발현 조절
shRNA 데이터베이스
RNA 간섭 (RNAi)은 관심 유전자의 RNA에 상보적인 짧은 RNA 서열 (~21-23 뉴클레오타이드)을 표적 세포에 도입하여 유전자 조절 방법입니다. 도입된 RNA가 상보적인 내인성 mRNA와 결합하여 생성된 이중 가닥 RNA가 세포에 의해 분해되므로, 번역이 차단되고 유전자 발현이 감소합니다. 이 접근법은 결합되지 않은 일부 mRNA가 기능성 단백질을 계속 생성하기 때문에 유전자를 완전히 knockout 하지는 못합니다.
Short hairpin RNA (shRNA)와 short interfering RNA (siRNA)은 RNAi에 흔히 사용되는 두 가지 방식입니다. shRNA는 안정성이 더 높은 DNA에 암호화된 hairpin 구조로, 장기적인 유전자 knockdown을 제공합니다. 반면 siRNA는 짧고 합성된 RNA로 직접 세포에 전달되어 일시적 knockdown을 유도합니다. 일반적인 siRNA 접근법에 비해 여러 이점을 제공하는 shRNA 매개 유전자 침묵은 대부분의 RNAi 응용에서 선호되는 방법입니다.
shRNA는 바이러스성 또는 비바이러스성 DNA 벡터를 이용해 표적 세포에 도입할 수 있습니다. 세포가 shRNA 벡터로 transfection되거나 transduction되면, shRNA는 핵 내에서 전사되어 hairpin 구조를 형성합니다. 이 구조는 침묵시키려는 표적 mRNA와 동일한 염기서열을 가진 sense strand (Fig. 1의 분홍색 가닥)와, 단일가닥 루프, 그리고 그 sense strand에 상보적인 antisense strand (Fig. 1의 청록색 가닥)으로 구성됩니다. 전사된 shRNA는 핵을 빠져나와 세포질에서 Dicer 효소에 의해 절단·처리되고, 이후 RNA-induced silencing complex (RISC)에 탑재되어 표적 mRNA를 인식하고 분해하는 과정을 수행합니다 (Figure 1).
Figure 1. RNAi 유형의 생성과 기능.
shRNA 발현을 제어하는 데 널리 사용되는 두 가지 접근 방식은 U6 기반 shRNA 발현과 miR 기반 shRNA 발현입니다. U6 기반 shRNA 벡터는 U6와 같은 RNA Polymerase III promoter에 의해 전사되는 단순한 stem-loop shRNA의 발현을 유도하는 반면, miR 기반 shRNA 벡터는 RNA Polymerase II promoter 하에서 microRNA scaffold가 포함된 shRNA를 발현하는 데 사용됩니다. U6 기반 및 miR 기반 벡터 시스템에 의해 발현된 shRNA는 세포질 내에서 유사한 기전을 통해 처리되어 궁극적으로 표적 유전자 침묵을 유도합니다. 그러나 핵 내에서 전사된 후, miR 기반 shRNA는 U6 기반 shRNA와 달리 구조 내에 내인성 miR 기반 서열이 존재하기 때문에 primary miRNA와 유사한 메커니즘을 통해 처리됩니다 (Figure 2).
Figure 2. U6 기반 및 miR 기반 shRNA를 이용한 유전자 발현 억제 메커니즘.
miR 기반 shRNA 벡터에서는 RNA polymerase II promoter를 사용하여 tissue-specific, inducible 또는 다양한 강도의 promoter를 활용할 수 있어, 상시 발현되는 U6 promoter로는 불가능한 다양한 실험 응용이 가능합니다. 또한, miRNA 기반 shRNA 시스템에서 Pol II promoter가 긴 전사체를 효율적으로 생성할 수 있다는 점은 다른 knockdown 벡터 시스템에 비해 여러 이점을 제공합니다. 여러 shRNA miR을 단일 폴리시스트론 (polycistron)으로 전사할 수 있어 세포 내에서 다수의 mature shRNA로 처리되며, 이를 통해 단일 벡터로 여러 유전자를 동시에 knockdown하거나 동일 유전자의 서로 다른 영역을 표적화할 수 있습니다. 이 벡터 시스템에서는 사용자가 선택한 단백질 코딩 유전자를 shRNA miR과 동일한 폴리시스트론 내에 배치할 수 있습니다. Figure 4에서와 같이 마커 ORF를 사용할 경우, 이 ORF를 이용하여 shRNA 전사를 직접 모니터링하거나, ORF와 shRNA의 동시 발현이 필요한 다른 목적으로 활용할 수 있습니다. Figure 3은 U6 기반과 miR30 기반 shRNA 시스템의 실험 비교를 보여줍니다. 약물 선별 전후 knockdown 효율은 일반적으로 U6 기반 시스템이 miR30 시스템의 하나 이상 shRNA 사용에 비해 더 높습니다.
아래 표는 U6 기반 및 miR 기반 shRNA 벡터 시스템을 요약한 것입니다.
| 카테고리 | U6-기반 shRNA 벡터 | miR-기반 shRNA 벡터 |
|---|---|---|
| shRNA 구조 | 심플한 stem-loop shRNA | microRNA scaffold를 이용한 shRNA 변형 |
| shRNA 길이 | 50-70 nt | >250 nt |
| Promoter | U6와 H1 같은 RNA Pol III promoter | 보편적, 조직특이적, 그리고 유도성 promoter를 포함한 RNA Pol II promoter |
| shRNA 처리 메커니즘 | 세포질내에서 Dicer에 의해서만 처리됨 | 핵에서는 Drosha에 의해, 세포질에서는 Dicer에 의해 처리됨 |
| 하나의 벡터에서 발현될 수 있는 shRNA 수 | 단일 shRNA (일반적으로) | 단일 또는 다중 shRNA |
| shRNA transcript에서 다른 ORF를 발현할 수 있는 능력 | No | Yes |
| 유전자 knockdown 효율 | 대체로 더 강력함 | 상대적으로 덜 강력함 |
| 독성 | 높은 세포 독성 | 감소된 세포 독성 |
VectorBuilder의 design studio는 온라인 shRNA design tool에 포함된 알고리즘을 활용해 효율적인 shRNA를 코딩하는 벡터를 생성할 수 있게 해줍니다. 이 도구는 주요 종에 최적화된 shRNA 데이터베이스를 제공하여 표적 유전자에 대한 높은 knockdown 효율의 shRNA를 설계할 수 있습니다. shRNA 디자인 시 RNAi consortium에서 사용하는 규칙과 유사한 기준을 적용합니다. 각 RefSeq 전사체에 대해 가능한 모든 21mer 후보 표적 사이트로 검색하며, knockdown 효율/특이성 또는 클로닝 가능성을 저하시키는 특징(동일 염기 ≥4 연속, G 또는 C ≥7 이상 연속, GC 함량 <25% 또는 >60%, 5' 말단 AA 등)을 가진 후보는 제외합니다. 모든 스코어는 ≥0이며 평균 ~5, 표준편차 ~5, 95%가 ≤15입니다. knockdown 스코어가 약 15인 shRNA는 최상의 knockdown 성능과 클로닝 가능성을 보이며, 스코어가 0인 shRNA는 가장 저조한 성능 또는 클로닝이 어려운 것으로 예측됩니다.
VectorBuilder의 shRNA 디자인 도구는 데이터베이스에서 표적 유전자를 검색할 수 있는 옵션을 제공합니다. 유전자 이름을 입력하면 해당 유전자에 대한 모든 사용 가능한 shRNA의 상세 정보가 표시되며, UCSC Genome Browser 링크를 통해 shRNA 서열과 모든 전사체 isoform을 확인할 수 있습니다. 데이터베이스는 knockdown 점수를 기준으로 내림차순으로 모든 shRNA를 순위 매기고, 최고 스코어의 상위 3개 shRNA를 추천합니다. knockdown 스코어는 이론적 지침일 뿐이며, 실제 knockdown 효율은 점수 예측과 크게 다를 수 있으므로 낮은 스코어의 표적 사이트도 잘 작동할 수 있음을 유의하십시오.
References
Mol Cell. 9:1327 (2002); Characterization of miR30-based gene knockdown.
Nucleic Acids Res. 34:e53 (2006); Development of miR155-based shRNA vectors.
J Gene Med. 9:620 (2007); Development of IPTG-inducible gene knockdown system.
Proc Natl Acad Sci USA. 101:10380 (2004); Development of Cre-lox-regulated gene knockdown system.
사례 연구
U6-기반 및 miR30-기반 shRNA 시스템
Inducible shRNA 시스템
Figure 3. U6 기반 및 miR30 기반 shRNA 렌티바이러스 시스템을 통한 고효율 EGFP knockdown. (A) U6-driven shRNA, CMV-driven miR30 기반 단일 shRNA, CMV-driven miR30 기반 4중 shRNA를 각각 탑재한 렌티바이러스 벡터를 렌티바이러스 입자로 패키징했습니다. EGFP를 안정적으로 발현하는 HEK293T 세포를 shRNA 렌티바이러스로 transduction한 후, 적절한 항생제를 사용한 약물 선별 전후에 flow cytometry로 EGFP 발현을 측정했습니다. (B) 약물 선별 전, U6 기반 shRNA로 EGFP 발현이 ~46% (P<0.001) 감소하고, CMV-driven miR30 기반 단일 shRNA로 13% (P<0.001), CMV-driven miR30 기반 4중 shRNA로 44% (P<0.001) 감소했습니다. (C) 약물 선별 후, U6 기반 shRNA로 ~72% (P<0.001), CMV-driven miR30 기반 단일 shRNA로 60% (P<0.001), CMV-driven miR30 기반 4중 shRNA로 67% (P<0.001) 감소했습니다. 상대적 EGFP 발현은 형질도입 세포의 평균 형광 강도(median fluorescence intensities (MFIs))를 비형질도입 세포의 MFI로 나눠 계산했습니다. 실험은 기술적 3반복으로 수행되었으며, 그림에 SD를 표시했습니다. p-value는 Tukey’s test로 계산했습니다.
Figure 4. miR30 기반 shRNA 렌티바이러스 시스템을 통한 EGFP knockdown 및 mCherry 발현. (A) mCherry와 miR30 기반 shRNA (scrambled control 또는 anti-EGFP)를 포함한 CMV-driven 발현 카세트를 탑재한 렌티바이러스 벡터를 렌티바이러스 입자로 포장했습니다. EGFP를 안정적으로 발현하는 HEK293T 세포를 miR30 기반 shRNA 렌티바이러스로 transduction한 후, 적절한 항생제를 사용한 약물 선별 후 형광 현미경과 flow cytometry로 EGFP 및 mCherry 발현을 측정했습니다. (B) 비형질도입 (non-transduction) 세포 및 mCherry-shRNA[Scramble] 렌티바이러스로 transduction한 세포에 비해, mCherry-shRNA[EGFP] 렌티바이러스로 transduction한 세포는 flow cytometry로 측정한 평균 형광 강도 median fluorescence intensities (MFIs))에서 EGFP 발현이 유의미하게 감소했습니다 (P<0.001). 또한 비형질도입 세포에서는 적색 형광이 검출되지 않았으나, miR30 기반 shRNA 렌티바이러스 (scrambled 및 anti-EGFP 모두)로 transduction한 세포에서는 강한 mCherry 발현이 관찰되었습니다.
Inducible shRNA 시스템은 다양한 포유류 세포에서 표적 유전자의 발현을 엄격하게 조절하고 시간적으로 제어하는 기능을 제공합니다. 이러한 shRNA는 tetracycline-기반 메커니즘 또는 IPTG-기반 메커니즘을 통해 제어될 수 있습니다.
- Tet-inducible shRNA knockdown
- IPTG-inducible shRNA knockdown
이 시스템은 TetR과 TetO 단백질 간의 상호작용을 이용하여 테트라사이클린 또는 그 유사체의 존재 여부에 따라 shRNA 발현을 조절합니다.

Figure 5. 렌티바이러스 tet-inducible shRNA 벡터 시스템을 이용한 EGFP 발현 억제. (A) 테트라사이클린 유도성 U6 기반 scramble shRNA 또는 EGFP 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 렌티바이러스 벡터를 해당 렌티바이러스 입자에 패키징하고 EGFP를 안정적으로 발현하는 HEK293T 세포에 transduction 시켰습니다. 적절한 항생제 (이 경우 puromycin)를 이용한 항생제 선택을 통해 transduction된 세포를 분리한 후, 1 µg/ml 독시사이클린 (dox)으로 처리하여 shRNA 발현을 유도하였습니다. 모든 실험군에 대해 유세포 분석 (flow cytometry)를 이용하여 EGFP의 상대 형광 강도 (Relative fluorescence intensity (RFI))를 정량화 하였습니다. (B) 유도성 EGFP shRNA 카세트를 발현하는 세포는 독시사이클린 유도 시 EGFP RFI가 약 60% 감소한 반면, 비표적 scramble shRNA를 발현하는 inducible shRNA 벡터는 독시사이클린 유도 시 EGFP RFI에 유의미한 영향을 미치지 않았습니다. (C) 각 그룹에 대해 대표적인 형광 현미경 이미지를 촬영하였습니다. Exposure: brightfield=10 ms; EGFP=100 ms. Magnification: 100x.
이 시스템은 박테리아의 LacI-LacO 상호작용을 통해 shRNA 발현을 조절하며, IPTG가 있을 때 발현이 활성화되고 IPTG가 없을 때 발현이 억제됩니다.

Figure 6. 렌티바이러스 IPTG-inducible shRNA 벡터 시스템을 이용한 EGFP 발현 억제. (A) IPTG 유도성 U6 기반 scramble shRNA 또는 EGFP 표적 shRNA 발현 카세트를 포함하는 렌티바이러스 벡터를 해당 렌티바이러스 입자에 패키징하고 EGFP를 안정적으로 발현하는 HEK293T 세포에 transduction 하였습니다. 적절한 항생제인 puromycin (Puro) 또는 blasticidin (Bsd)을 이용한 항생제 선택을 통해 transduction된 세포를 분리한 후, 1 mM IPTG를 처리하여 shRNA 발현을 유도하였습니다. 모든 실험군에서 유세포 분석기 (FCM)를 이용하여 EGFP의 평균 형광 강도 (Median fluorescence intensity (MFI))를 측정하였습니다. (B) 유도성 EGFP shRNA 카세트를 발현하는 세포는 IPTG 유도 시 EGFP MFI가 약 42% 감소하였습니다. 이러한 관찰 결과는 puromycin 또는 blasticidin 내성 유전자를 포함하는 유도성 shRNA 벡터 모두에서 일관되게 나타났습니다. 비표적 scramble shRNA를 발현하는 유도성 shRNA 벡터는 IPTG 유도 시 EGFP 평균 형광 강도 (MFI)에 아무런 영향을 미치지 않았습니다. 더욱이, LacI 억제자가 없는 유도성 shRNA 벡터로 transduction된 세포에서는 벡터의 유도 기능이 소실되었고, IPTG 유도 여부와 관계없이 EGFP shRNA에 의해 EGFP 발현이 지속적으로 억제되었습니다.
정보 자료
FAQ
두 방법의 상세한 비교는 아래 표에 요약되어 있습니다.
| shRNA-매개 knockdown | siRNA-매개 knockdown | |
|---|---|---|
| 전달 방법 | 벡터 유형에 따라 transfection 또는 transduction | Transfection |
| Knockdown 지속 | Long-term | Transient |
| Episomal 또는 stable integration | 전달 방법에 따라 episomal 또는 stable 가능 | Episomal |
| 선택 마커 추가 가능 | Yes, 형광 마커 또는 항생제 내성 마커 추가 가능 | No |
| 세포 유형 | 다양한 세포 유형에 적합 | Transfection 효율이 높은 세포에만 적합 |
| Off-target 효과 | Reduced off-target effects | High off-target effects |
| Degradation rate | Low | High |
shRNA-mediated knockdown 또는 nuclease-mediated knockout (예: CRISPR 또는 TALEN)는 세포 배양에서 특정 유전자의 loss-of-function 효과를 연구하는 데 유용한 실험적 접근법입니다. 특정 응용 분야에 가장 적합한 방법을 결정하기 위해서는 몇 가지 사항을 고려해야 합니다.
메커니즘
- Knockdown 벡터: Knockdown 벡터는 표적 mRNA의 절단을 유도하고 번역을 억제함으로써 세포 내에서 표적 mRNA의 기능을 저해하는 short hairpin RNA (shRNA)를 발현합니다. 따라서 shRNA knockdown 벡터는 관심 유전자의 DNA 염기서열 변화와는 관련이 없습니다.
- Knockout 벡터: CRISPR와 TALEN은 모두 뉴클레아제를 이용하여 게놈 내 특정 표적 부위를 절단하는 방식으로 작동합니다. 이러한 절단 부위는 세포 내 복구 기전에 의해 비효율적으로 복구되어, 복구 부위에 작은 삽입이나 삭제와 같은 영구적인 돌연변이가 발생합니다. 이러한 돌연변이 중 일부는 frame-shift, 조기 종결 코돈 등으로 인해 해당 유전자의 기능 상실을 초래합니다. 게놈 내에서 서로 가까이 위치한 두 개의 절단 부위(예: ~kb 이내)를 동시에 표적으로 삼을 경우, 그 사이 영역의 삭제도 발생할 수 있습니다.
유효성
shRNA를 이용한 유전자 발현 억제 (shRNA-mediated knockdown)는 표적 유전자의 발현을 완전히 억제할 수는 없습니다. 가장 효과적인 shRNA를 사용하더라도 표적 유전자의 잔여 발현은 어느 정도 남아 있게 됩니다. 반면, CRISPR 및 TALEN 기술은 처리된 세포의 일부에서 영구적인 돌연변이를 유도하여 유전자 기능의 완전한 상실을 초래할 수 있습니다.
일관성과 균일성
shRNA 벡터는 일반적으로 처리된 세포 집단 내에서 세포 간 높은 균일성을 제공하며, 실험 간에도 매우 일관된 결과를 나타냅니다. 반면 CRISPR와 TALEN은 도입된 돌연변이의 확률적 (stochastic) 특성 때문에 세포 간 결과가 매우 불균일합니다. 관심 유전자를 세포 내에서 완전히 knockout 하려면 세포 내 모든 유전자 복제본이 knockout 되어야 합니다. 정상 세포는 대부분의 유전자에 2개의 카피를 가지며 (성염색체 연관 유전자를 제외), 암세포는 2개 이상을 가질 수 있으므로 이러한 완전 knockout 세포는 처리된 전체 세포 중 매우 적은 비율을 차지할 수 있습니다. 이러한 이유로 nuclease 매개 knockout 실험에서는 관심 유전자의 모든 카피가 knockout된 클론을 식별하기 위해 sequencing을 통한 스크리닝해야 합니다.
Off-target 효과
shRNA 매개 knockdown과 nuclease 매개 knockout 모두에서 오프타겟 (off-target) 효과가 보고되었습니다. 오프타겟 효과로 인한 표현형 (phenotype)은 동일한 유전자를 표적으로 하는 여러 개의 서로 다른 shRNA를 사용하여 예측할 수 있습니다. 만약 여러 개의 서로 다른 shRNA로 유전자 발현을 억제했을 때 일관된 표현형이 나타난다면, 이는 오프타겟 효과에 의한 표현형이 아님을 시사합니다. CRISPR 또는 TALEN을 이용한 유전자 제거의 경우, 오프타겟 돌연변이로 인해 발생할 수 있는 표현형을 고려하기 위해 loss-of-function 돌연변이를 포함하는 여러 클론을 분석해야 합니다. 추가로, 생물정보학적으로 확인된 오프타겟 부위의 염기서열을 분석하여 돌연변이 여부를 확인할 수 있습니다.
Design your homologous recombination donor vector online모든 shRNA가 효과가 있는 것은 아닙니다.
저희 경험과 고객 피드백에 따르면, 임의의 유전자에 대해 3~4개의 shRNA를 테스트할 때 일반적으로 2~3개가 적절하거나 좋은 knockdown 효과를 보입니다. 그러나 shRNA를 사용할 때는 모든 shRNA가 효과가 있는 것은 아니라는 점을 인지해야 합니다. 일반적으로 shRNA의 약 50-70%가 눈에 띄는 knockdown 효과를 보이며, 그중 약 20-30%가 강한 knockdown을 나타냅니다. 특정 유전자를 타겟으로 한 몇 개의 shRNA를 시도했을 때 만족스러운 knockdown을 보이는 것이 하나도 찾지 못할 수도 있습니다. 이런 경우에는 문헌 검증된 shRNA를 포함하여 더 많은 shRNA를 시도하는 것이 좋습니다. 많은 연구자들이 동일한 유전자를 타겟으로 하는 shRNA '칵테일' (즉, 서로 다른 shRNA 혼합)을 사용하기도 하며, 이는 때때로 knockdown 효율을 개선할 수 있습니다.
유전자의 knockdown 검증 분석이 제대로 수행되지 않았습니다.
shRNA knockdown 효율을 평가하는 가장 일반적이고 민감한 분석법은 RT-qPCR입니다. 경우에 따라 여러 쌍의 프라이머를 시도해보고 가장 특이적이고 효율적인 쌍을 선택해야 할 수도 있습니다. 일반적으로 RT-qPCR 프라이머는 유전체 DNA 증폭을 피하기 위해 가능하면 엑손-엑손 접합부를 포함해야 합니다. 새로운 프라이머 쌍을 사용할 때는 PCR 산물을 아가로스 겔에서 전기영동하여 밴드를 확인하거나, 시퀀싱을 통해 PCR 산물을 검증하는 것이 좋습니다. 유전체 DNA 오염 수준을 더 정확하게 추정하기 위해 RT-qPCR에는 항상 마이너스 RT 대조군을 포함해야 합니다. Primer Design Tool를 사용하면 컴퓨터 시뮬레이션을 통해 프라이머의 품질을 더 잘 평가할 수 있습니다.
Knockdown 효율은 western blot으로도 평가할 수 있습니다. 그러나 Western blot은 비특이적 항체 결합으로 인한 위양성 밴드가 발생하기 쉬우며, 이로 인해 knockdown이 없다고 잘못 해석할 수 있습니다. 따라서 사용되는 항체가 실제로 관심 유전자에 특이적인지 확인하는 데 주의를 기울여야 합니다.
shRNA가 유전자의 전사체 이소형 (transcript isoform) 중 일부만 타겟팅 할 수 있습니다.
shRNA를 설계할 때는 특정 이형체만 억제하는 것이 목적이 아니라면, 가능한 한 많은 전사체 이소형을 표적으로 삼을 수 있는 shRNA를 설계하는 것이 좋습니다. VectorBuilder는 일반적인 종에 최적화된 shRNA 데이터베이스를 구축해 놓았습니다. VectorBuilder에서 shRNA 벡터를 설계하고 shRNA 구성요소를 벡터에 삽입하면, 데이터베이스에서 표적 유전자를 검색할 수 있는 옵션이 제공됩니다. 검색 결과에는 해당 유전자를 위해 설계된 모든 shRNA에 대한 자세한 정보가 표시되며, UCSC Genome Browser 링크를 통해 게놈 서열 및 모든 전사체 이소형과 함께 shRNA를 확인할 수 있습니다.






